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12.2: Modificaciones en los extremos 5' y 3' del ARNm

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    Como se discutió anteriormente, los ARNm eucariotas están tapados en su extremo 5' y poliadenilados en su extremo 3'. Se han desarrollado ensayos in vitro para estas reacciones y se han identificado varias de las actividades enzimáticas. Estos serán revisados en esta sección. La poliadenilación no se limita a eucariotas. Varios ARNm en E. coli también están poliadenilados. Se trata de un área de estudio bastante nueva.

    Figura 3.3.5. Los ARNm pueden modificarse en los extremos 5' y 3'.

    Modificación en el extremo 5': Estructura de la tapa

    El “cap” es un 5'‑GMP metilado que se une a través de su fosfato 5' al b‑fosforilo del nucleótido de inicio (generalmente A); ver Figura 3.3.6. El tapado ocurre poco después de que la transcripción haya comenzado. Ocurre en una serie de etapas enzimáticas (Figura 3.3.7):

    1. Eliminar el g‑fosforilo del nucleótido de inicio (ARN trifosfatasa)
    2. Vincular una GMP con el b‑fosforilo del nucleótido de inicio (ARNm guaniltransferasa). El GMP se deriva de GTP, y está unido por su fosfato 5' al difosfato 5' del nucleótido de inicio. Se libera pirofosfato.
    3. El N‑7 de la tapa GMP es metilado (metiltransferasa), el donante es S‑adenosilo metionina.
    4. Las metilaciones posteriores ocurren en el 2' OH de los dos primeros nucleótidos del ARNm.

    El tapado se ha implicado en tener un papel en la eficiencia de la traducción y en la estabilidad del ARNm.

    Figura 3.3.6. Estructura del capuchón 5' en ARNm eucariotas.
    Figura 3.3.7. Síntesis paso a paso de la tapa 5'.

    Se requieren varias proteínas para la escisión y poliadenilación en el extremo 3':

    1. La CPSF es un factor de especificidad tetramérica; reconoce y se une a la señal de poliadenilación de AAUAAA.
    2. CFI y CFII son factores de escisión.
    3. La PAP es la poliA polimerasa.
    4. CFI, CFII y PAP forman un complejo que se une al ARN naciente en el sitio de escisión, dirigido por el factor de especificidad de CPSF.
    5. CstF es una proteína adicional implicada en este proceso in vitro, pero actualmente se desconoce su función precisa.
    Figura 3.3.8

    Colaboradores y Atribuciones


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