1.2: Técnicas de biopsia tumoral y ganglio linfático de cabeza y cuello

ATLAS DE ACCESO ABIERTO DE Otorrinolaringología, Cirugía Operatoria de Cabeza y Cuello

Biopsia de tumores de cabeza y cuello y ganglios linfáticos cervicales

Johan Fagan, Kathy Taylor, Ellen Bolding

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Casi cualquier masa o tumor requiere diagnóstico citológico o histológico antes de que se pueda formular un plan de manejo. La realización de biopsia tisular de masas y ganglios linfáticos de la cabeza y el cuello llena de miedo a muchos médicos junior debido a la compleja anatomía y a las estructuras vasculares y nervios que atraviesan la cabeza y el cuello. Sin embargo, el material diagnóstico se puede obtener de manera segura de la mayoría de las masas en la cabeza y el cuello en un entorno de atención ambulatoria

En este capítulo se presentan técnicas y escollos para obtener material diagnóstico. Las técnicas incluyen citología con cepillo, biopsia/citología por aspiración con aguja fina (FNAB/FNAC), biopsia de núcleo, biopsia con punzón y biopsia quirúrgica abierta

Los tumores del tracto aerodigestivo superior son idealmente biopsiados directamente ya sea transoralmente o transnasalmente. Los tumores subcutáneos se muestrean primero por la técnica menos invasiva; solo si el diagnóstico permanece en duda se emplean técnicas de biopsia progresivamente más invasivas hasta que se realiza un diagnóstico. Una secuencia diagnóstica típica es: FNAC - biopsia de núcleo - biopsia quirúrgica abierta.

¿Qué requieren los patólogos para hacer un diagnóstico?

Detalle clínico: El diagnóstico diferencial de un patólogo y los tipos de pruebas patológicas están informados por la información clínica; esto es particularmente importante con FNAC.

FNAC

• Aspirado celular
• Manchar el material directamente sobre el portaobjetos
• Pulverizar con citofijador y dejar secar
• También puede enjuagar la aguja en solución de alcohol al 50% o en líquido de citología a base de líquido para recuperar las células “pegadas” en la aguja

Biopsia de tejido

• Tamaño adecuado
• Técnica de biopsia (no aplastada)
• Desde la periferia del espécimen (evita tumor necrótico)
• Colocar la biopsia en formalina al 10% para su fijación
• Si sospecha TB u otra causa infecciosa, también colocar una biopsia en solución salina estéril o medio de cultivo para microbiología

Trampas y advertencias

• Detalle clínico insuficiente en el formulario de solicitud de patología: El diagnóstico diferencial de un patólogo y los tipos de pruebas patológicas pueden orientarse en la dirección correcta al contar con la información clínica adecuada; esto es particularmente importante con la citología
• Sin excluir un tumor primario antes de proceder a la biopsia de ganglio linfático: Especialmente en manos de no otorrinolaringólogos, los pacientes comúnmente (de manera inapropiada) se someten a una biopsia por escisión de un ganglio linfático cervical antes de haber sido sometidos a una búsqueda exhaustiva de un tumor primario malignidad en el tracto aerodigestivo superior o piel. No solo puede resultar innecesaria la biopsia de ganglio linfático, sino que también puede complicar el tratamiento quirúrgico posterior del cuello
• No considerar causas infecciosas: Enfermedades como la tuberculosis (TB) y la actinomicosis (Figura 1) pueden hacerse pasar por tumores malignos y metástasis ganglionar; por lo tanto, es recomendable enviar un segmento de un ganglio linfático extirpado para cultivo de TB
• Proceder a la biopsia quirúrgica abierta de una masa de cuello o ganglio linfático antes de la FNAC: la FNAC es barata, segura y mínimamente invasiva y a menudo produce un diagnóstico que hace innecesaria

Figura 1: Actinomices rodeados de neutrófilos

• Aspirado sanguinolento de FNAC: Un frotis sanguinolento a menudo no es útil; repetir el procedimiento usando una técnica sin aspiración
• Tamaño inadecuado de la muestra de la biopsia de tejido abierto: Una vez abierto el cuello, el cirujano debe asegurarse de que se muestree un volumen adecuado de tejido para evitar tener que repetir la biopsia
• Toma de una biopsia del centro necrótico de un tumor: Esto se aplica especialmente a la cavidad oral; biopsia de células viables en la periferia de un tumor
• Tejido no representativo: Cuando se repite una biopsia después de una biopsia previa “no representativa” o “inadecuada”, se han congelado la sección, no para hacer un diagnóstico, sino para asegurar que efectivamente se ha muestreado el tejido patológico
• Suponiendo que un aspirado quístico es infeccioso o benigno, y no maligno: Ciertas neoplasias malignas de cabeza y cuello, por ejemplo, carcinoma de células escamosas (CCE) de la orofaringe y piel, y el melanoma metastásico pueden tener metástasis en los ganglios linfáticos quísticos (Figura 2); la la apariencia del aspirado puede variar de cristalina a purulenta. Por lo tanto, los aspirados quísticos siempre deben enviarse para examen citológico incluso cuando no se sospeche malignidad. Frotar el aspirado de la manera más uniforme posible (Figura 6). El SCC quístico bien diferenciado también puede confundirse con un quiste epidermoide benigno o branquial
• Medio de transporte incorrecto: Asegurar que el tejido enviado para análisis histológico se coloca en formaldehído en un recipiente sellado; el tejido enviado para cultivo de TB se transporta en solución salina normal
• Anticoagulación: FNAC se puede realizar de manera segura en pacientes que toman aspirina y antiinflamatorios no esteroideos. Los pacientes con anticoagulantes o con trastornos hemorrágicos pueden presentar un problema si la anticoagulación no se puede detener de manera segura; el FNAC guiado por ultrasonido (USGFNAC) puede ser apropiado en tales casos para evitar la punción de vasos sanguíneos grandes

Figura 2: Metástasis ganglionar cervical quística originada por carcinoma de células escamosas de la amígdala

Citología/biopsia por aspiración con aguja fina (FNAC/FNAB)

Esta es una técnica mediante la cual se realiza un diagnóstico citológico sobre un aspirado de material celular que ha sido recolectado a través de una aguja de pequeño calibre y untado y fijado en un portaobjetos de microscopio de vidrio. En ausencia de un tumor primario obvio, la FNAC es generalmente la primera ^línea de investigación de una masa cervical. Debido a que la relación de las células tumorales con la membrana basal no se puede determinar en la citología, el citólogo es incapaz de distinguir entre displasia de alto grado (carcinoma in situ) y carcinoma invasivo; esta distinción solo se puede hacer en el examen histológico de un tejido biopsia que incluye la membrana basal.

La FNAC es particularmente útil en la cabeza y el cuello por las siguientes razones:

• Sencillo, rápido, seguro y económico
• Requiere mínima práctica y entrenamiento
• No se requiere anestesia (ni siquiera anestesia local)
• Diagnóstico rápido
• Riesgo insignificante de lesión a los nervios, por ejemplo, nervio facial en la glándula parótida
• No causa siembra de células tumorales
• Riesgo insignificante de sangrado; si se perfora un vaso mayor, por ejemplo, la arteria carótida o la vena yugular interna con una aguja de calibre pequeño, el sangrado se asienta con la presión del dedo aplicada al sitio de la punción
• Buen rendimiento para SCC metastásico y para diferenciar las masas inflamatorias de las neoplasias

Equipo para FNAC (Figura 3)

• Aguja de calibre 23: una aguja delgada causa menos sangrado, es menos dolorosa y tiene un rendimiento diagnóstico similar al de las agujas más grandes
• Jeringa (5 o 10 mL)
• Hisopo de gasa con alcohol/yodo para esterilizar la piel
• Hisopo de gasa para comprimir el sitio de punción con aguja
• Dos portaobjetos de microscopio de vidrio
• Fijador citológico (a menos que se seque al aire)

Anestesia local

Los autores no utilizan anestesia local ya que el pinchazo de aguja adicional para el anestésico también causa molestias y la solución anestésica puede oscurecer una pequeña masa.

Figura 3: Equipo FNAC: jeringa, hisopo de gasa, 2 portaobjetos de vidrio para microscopio, aguja calibre 23, hisopo con alcohol, fijador

Accediendo a la masa

La FNAC se realiza ya sea con el paciente sentado en una silla o acostado. Con FNAC de la tiroides el cuello puede estar hiperextendido sobre una almohadilla colocada debajo de los hombros. El acceso a los ganglios linfáticos a lo largo de la cadena yugular puede mejorarse girando la cabeza. Si es posible, la masa se fija entre los dedos de la mano no dominante.

Las masas en el Nivel 1b del cuello pueden ser más accesibles y mejor estabilizadas desplazándolas inferolateralmente con un dedo colocado en el piso lateral de la boca. Sin embargo, se debe tener mucho cuidado de no perforar el dedo del operador en la boca con la punta de la aguja.

El FNAC guiado por ultrasonido (USGFNAC) o guiado por TC se puede hacer para masas que son difíciles de acceder con confianza, por ejemplo, masas profundamente asentadas en el lóbulo profundo del espacio parótido o parafaríngeo, o masas más pequeñas.

Recolección del material celular

Técnica de no aspiración

También conocido como método capilar de aguja fina, este es el método preferido por los autores. Se basa en la acción capilar para extraer células cizalladas hasta una aguja de pequeño calibre. La técnica de no aspiración es más fácil de realizar que la técnica de aspiración, mejora la capacidad del operador para dirigir la punta de la aguja hacia una masa más pequeña, y es menos probable que cause un aspirado sanguinolento, lo que es particularmente ventajoso con estructuras vasculares como la glándula tiroides.

• Sujete el cubo de una aguja de calibre 23 entre el dedo índico/medio y el pulgar de la mano no dominante sin necesidad de una jeringa adjunta
• Avanzar la aguja a través de la piel hacia la masa
• Mueva la aguja hacia adelante y hacia atrás con trazos cortos y rápidos mientras gira la aguja
• Retirar la aguja
• Acople una jeringa con émbolo retraído, al cubo de la aguja
• Expulsar cuidadosamente el material sobre un portaobjetos de microscopio de vidrio

Técnica de aspiración

La técnica de aspiración emplea presión negativa generada por una jeringa así como el efecto de cizallamiento de la aguja, para aspirar material celular de una masa. Se puede utilizar un soporte de jeringa con empuñadura de pistola ya que permite una succión más uniforme y facilita dirigir la aguja (Figura 4).

• Adjuntar la aguja a la jeringa
• Inserte la aguja en la masa sin aplicar succión
• Tire hacia atrás del émbolo de la jeringa
• Mantenga la succión mientras mueve la aguja hacia adelante y hacia atrás
• Suelte el émbolo de la jeringa para aliviar la presión negativa
• Retirar la aguja
• Desconecte la aguja de la jeringa
• Retraer el émbolo de la jeringa para llenarla de aire y volver a colocarla a la aguja
• Expulsar el material aspirado sobre un portaobjetos de microscopio de vidrio

Figuras 4a, b: Ejemplo de soporte de jeringa con empuñadura de pistola

Manchar el aspirado

Tan pronto como el aspirado ha sido expulsado sobre el portaobjetos de microscopio de vidrio, se utiliza un ^segundo portaobjetos para untar el material celular en una monocapa de células para su examen microscópico (Figura 5).

La Figura 6 ilustra dos técnicas que pueden usarse para crear una película delgada. La técnica de frotis “pull-push” solo es aplicable a aspirados líquidos. Los autores favorecen la técnica llamada “aplastamiento” para FNAC de tumores sólidos que implica untar suavemente el tejido entre dos portaobjetos de vidrio opuestos.

Figura 5: Ejemplo de frotis que muestra células oncocíticas y linfocitos demasiado gruesos a la izquierda, y un grosor deseado (monocapa) a la derecha

Figura 6: Técnicas de frotis “Pull-push” (arriba) y “aplastar” (abajo)

Fijación del frotis

Los frotis se fijan inmediatamente para evitar el artefacto de contracción. Esto se logra ya sea mediante fijación húmeda o secado al aire. Consulte a sus citopatólogos sobre su método de fijación preferido. Como se utilizan diferentes tinciones para cada técnica, algunos prefieren usar ambas técnicas para un mismo espécimen, ya que los dos métodos pueden producir resultados complementarios.

Técnica de fijación húmeda

Esto se logra sumergiendo el portaobjetos en una solución de etanol al 95%, o aplicando un fijador en aerosol (Figura 3). Los fijadores de pulverización generalmente consisten en una mezcla de polietilenglicol y alcohol etílico o alcohol isopropílico. El alcohol se evapora y deja el glicol cubriendo el frotis. El material fijado mediante la técnica de fijación húmeda se puede teñir tanto con manchas de Papanicolaou (PAP) como de hematoxilina-eosina (H&E) (Figura 7).

Figura 7: Ejemplos de frotis H&E que muestran células oncocíticas y linfocitos

Técnica de fijación de secado al aire

El material manchado se deja secar al aire; el secado debe ser rápido y puede ser ayudado con un secador de pelo o un ventilador. La mancha WrightGiemsa se utiliza para frotis secados al aire.

Etiquetado

Etiquetar las diapositivas con los detalles del paciente y el origen del aspirado. Las diapositivas de la Figura 8 han sido arenadas en un extremo para que los detalles se puedan escribir en la diapositiva con lápiz.

Figura 8: Extremo de portaobjetos con chorro de arena para etiquetar con lápiz

Citología a base de líquidos

Esta técnica es útil para aspirados hipocelulares. En lugar de extenderse sobre un portaobjetos de vidrio, el material obtenido por aspiración o por citocepillado se transfiere a un vial de fijador. Luego se centrifuga el vial y se usa el sedimento para el frotis.

Citología exfoliativa o brocha

La citología con pincel es barata, no invasiva y prácticamente indolora y requiere un entrenamiento mínimo. Aunque es altamente específico, es menos sensible es decir, la citología cepillada negativa no descarta malignidad. Por lo tanto, es útil para el tamizaje de lesiones orales sospechosas; si se identifican células displásicas o alteraciones moleculares, los pacientes deben ser referidos para biopsia tisular.

La Figura 9 muestra una vista en primer plano de la punta de un citocepillo. Un cepillo de dientes es una alternativa confiable y barata (Figura 10).

Figura 9: Punta del citocepillo

Figura 10: El cepillo de dientes es una alternativa confiable y barata para un citocepillo ¹

Método de citología con cepillo

Aplicar el citocepillo sobre la lesión oral con suficiente presión para inclinar ligeramente el mango

• Gire el citocepillo 360° mientras aplica presión a la lesión
• El sangrado punteado indica que la membrana basal se ha roto y se ha muestreado una profundidad de tejido adecuada
• Deposite los pinceles en un portaobjetos de vidrio de microscopio enrollando el cepillo sobre la superficie del portaobjetos 360°
• Fijar inmediatamente el frotis de acuerdo con la técnica previamente descrita con FNAC
• Etiquetar las diapositivas con los detalles del paciente y el origen del aspirado

Biopsia Trucut

La biopsia percutánea del núcleo permite cosechar un núcleo sólido del tumor para su examen histológico en un entorno ambulatorio. Generalmente se realiza con un sistema de biopsia Trucut. A diferencia de FNAC, la biopsia Trucut puede sembrar células tumorales; por lo tanto, evitar su uso para tumores de glándulas salivales, melanomas etc. a menos que el tumor se considere inoperable.

Una cánula externa desenfunda una aguja puntiaguda que puede ser retraída y avanzada dentro y fuera de la cánula. La aguja tiene una muesca que atrapa un núcleo de tejido que ha sido cortado del tumor por el extremo afilado de la cánula externa (Figuras 11a-d). Requiere una técnica a dos manos, aunque también están disponibles sistemas automatizados y semiautomatizados.

Método

• Limpie e infiltre la piel con anestesia local en el sitio de biopsia previsto
• Fijar la masa con la mano no dominante
• Hacer una pequeña incisión de arma blanca (3 mm) en la piel con un bisturí
• Con la aguja central retraída en la cánula (Figuras 11 a, b), avance la aguja Trucut y la cánula hacia la masa teniendo cuidado de evitar vasos grandes

Figura 11: Aguja de biopsia Trucut con émbolo retraído (a, b) y émbolo avanzado (c, d)

• Estabilizar la posición del mango de la cánula externa con la mano no dominante
• Avanzar el émbolo (que está unido a la aguja) para que la aguja se extruya desde la punta de la cánula hacia la masa (Figuras 11 c, d); esto permite que el tejido tumoral llene la muesca en la aguja
• Asegura la posición del mango de la aguja con la mano dominante mientras avanza rápidamente el mango de la cánula externa con la mano no dominante para que la cánula avance sobre la muesca de la aguja, cortando y atrapando el tejido tumoral que se ha prolapsado en la muesca
• Retirar el aparato Trucut del paciente
• Avanzar el mango de la aguja para exponer el núcleo de tejido (Figura 12)
• Colocar el núcleo de tejido en un frasco de espécimen con formaldehído
• Aplicar una ligera presión a la incisión para hemostasia

Figura 12: Núcleo de tejido en la muesca de la aguja Trucut

Biopsia de tumores de la mucosa oral y orofaríngea

Los tumores mucosos del tracto aerodigestivo superior son típicamente biopsiados bajo anestesia local en el consultorio o clínica ambulatoria. Se aplica anestesia tópica a la mucosa después de lo cual se inyecta anestesia local (1% o 2% de lidocaína con 1:100 ,000 epinefrina) en la submucosa circundante o se realiza un bloqueo nervioso, por ejemplo, del nervio lingual (http://emedicine. medscape.com/article/82850-overview).

Una vez bien anestesiada, se realiza una biopsia por ponche con fórceps Blakesley, teniendo cuidado de no aplastar el tejido. Se prefiere un fórceps Blakesley de corte pasante ya que no desgarra el tejido y causa menos artefacto de aplastamiento (Figura 13). El sangrado es generalmente menor y se detiene espontáneamente o se puede detener con cauterización química usando una barra de nitrato de plata (Figura 14).

Figura 13: Pinzas nasales Blakesley (arriba); fórceps Blakesley de corte pasante (abajo)

Figura 14: Varillas de nitrato de plata utilizadas para hemostasia

Biopsia Punch de Piel

La biopsia por punzón se utiliza para lesiones cutáneas pigmentadas, neoplasias, trastornos inflamatorios y crónicos de la piel. Se realiza bajo anestesia local con una cuchilla circular unida a un mango que se gira a medida que se avanza para producir un núcleo de piel cilíndrico de 3-4 mm de grosor completo (Figura 15).

Figura 15: Punzón de 3 mm/4 mm

Método

• Determinar la dirección de las líneas de Langer (líneas de tensión cutánea); estirar la piel perpendicular a las líneas mientras se realiza la biopsia da como resultado una herida elíptica con el eje largo a lo largo de las líneas de Langer y permite un cierre más fácil con una sola sutura y un mejor resultado cosmético (Figura 16).

Figura 16: Líneas de Langer/Líneas de tensión

• Seleccione un instrumento de biopsia con punzón apropiado (3 o 4 mm)
• Limpie e infiltre la piel con lidocaína al 2% con epinefrina
• Estirar la piel a 90 ^o a las líneas de Langer entre el pulgar y el índice de la mano no dominante
• Aplicar el punzón verticalmente sobre la piel y girar el punzón entre el pulgar y el índice de la mano dominante, cortando a través de la epidermis, la dermis y en la grasa subcutánea (Figuras 17, 18)
• Retire el punzón
• Eleve suavemente el núcleo cilíndrico de 3-4 mm de la piel con una aguja para evitar aplastar el artefacto, y cortarlo libremente en su base con tijeras de iris
• Solo los sitios de biopsia con punzón más grandes requieren cierre con una sola sutura de nylon

Figura 17: Punzón de diámetro apropiado aplicado a la piel

Figura 18: Gire el punzón a través de la piel y divida el espécimen con tijeras finas debajo de la dermis mientras lo sujeta con una aguja

Biopsia quirúrgica abierta

La biopsia quirúrgica abierta está indicada cuando la FNAC y la biopsia Trucut no son concluyentes o sugieren linfoma.

Anestesia: La biopsia se realiza bajo anestesia local o general. Debido a que tomar una biopsia de un ganglio linfático profundamente arraigado suele ser más difícil de lo esperado, especialmente para un cirujano no bien versado en la anatomía quirúrgica detallada del cuello, uno debe tener un umbral bajo para realizar tales biopsias bajo anestesia general.

Hemostasia: Al concluir la cirugía, solicite al anestesista que realice un procedimiento de Valsalva para identificar las hemorragias venosas. Tener un umbral bajo para dejar un drenaje en su lugar para prevenir un hematoma.

Incisiones cutáneas: Las incisiones se realizan a lo largo de las líneas de Langer (Figura 16); cuando posteriormente se puede requerir una disección del cuello, las incisiones deben hacerse a lo largo de las líneas de incisión de disección del cuello.

Biopsia de ganglio linfático: Idealmente, los ganglios linfáticos deben ser extirpados completamente en lugar de realizar una incisión para evitar contaminar el cuello con células cancerosas de una metástasis cervical insospechada.

Biopsia del triángulo submandibular (Nivel 1): Las masas de la glándula submandibular se extirpan resecando toda la glándula. La extirpación de los ganglios linfáticos en las proximidades de la rama mandibular pone el nervio mandibular marginal en riesgo de lesión; es más seguro y cosméticamente mejor colocar la incisión en las proximidades del hueso hioides; levantar un colgajo de base superior sobre el Nivel 1 como para una disección del cuello o como para la escisión del Glándula salival submandibular (Ver Escisión de glándula submandibular); e identificar el nervio mandibular marginal donde cruza los vasos faciales en profundidad hasta el platysma antes de extirpar el nódulo (Figura 19).

Biopsia de ganglio linfático en triángulo posterior (Nivel V): El nervio accesorio espinal es muy superficial en el triángulo posterior, a menudo solo profundo a la piel en un paciente delgado. La lesión en el nervio es una causa común de litigio. Sale del músculo esternocleidomastoideo para ingresar al triángulo posterior aproximadamente 1 cm por detrás del punto de Erb que se encuentra en la unión de los tercios superior y medio del músculo por donde salen las ramas del plexo cervical (Figura 20). Evite los relajantes musculares para que la estimulación mecánica o eléctrica pueda ser utilizada para ayudar a identificar el nervio

Figura 19: Se observa el nervio mandibular marginal cruzando la arteria y vena facial (cuello derecho)

Figura 20: Curso del nervio accesorio espinal (Wikipedia)

Biopsia parotídea: La principal preocupación es la lesión del nervio facial. Aparte de estar en manos de un cirujano parótida experimentado, una masa no debe ser simplemente extirpada, sino removida por parotidectomía parcial formal con identificación del nervio facial (Ver Parotidectomía).

Tumores nasales y nasofaríngeos

Los tumores en la cavidad nasal y nasofaringe generalmente se pueden realizar biopsias en el departamento de consultorio/ambulatorio bajo anestesia local con la excepción de los tumores vasculares como los angiofibromas. Los angiofibromas deben sospecharse en varones más jóvenes y no deben ser biopsiados.

Técnica de biopsia endoscópica ambulatoria de la nasofaringe

• Paciente inhala anestésico local tópico (4% lidocaína) y descongestionante (1% fenilefrina) por la nariz para facilitar el paso de instrumentos por la nariz y debido a que la biopsia de mucosa nasofaríngea normal causa molestias
• Inspeccionar ambas cavidades nasales y la nasofaringe con un endoscopio flexible o rígido (Figura 21)

Figura 21: Vista sagital de la nasofaringe

• Examinar la masa y anotar el abordaje transnasal más fácil para las pinzas de biopsia
• Pase suavemente un fórceps nasal Blakesley ciegamente a lo largo del piso de la nariz hasta que se detenga contra la nasofaringe
• Incline la cabeza del paciente hacia atrás aproximadamente 30 ^o para que el fórceps Blakesley no se caiga de la nariz cuando se suelte
• Pasar un endoscopio flexible o rígido por la cavidad nasal contralateral (o ipsilateral)
• Visualizar la punta del fórceps de biopsia en la nasofaringe
• Biopsia del tumor bajo visión directa y retiró el fórceps y el espécimen
• El sangrado significativo es inusual

Técnica de biopsia transoral de nasofaringe bajo anestesia general

• Intubar al paciente por vía oral
• Colocar al paciente en posición de amigdalectomía
• Insertar una mordaza de amigdalectomía (Boyle Davis)
• Pasar un catéter de succión a través de cada cavidad nasal, alrededor del paladar blando, y hacia fuera de la boca y retraer el paladar anteriormente
• La nasofaringe se puede observar usando un espejo de laringoscopia calentado colocado en la orofaringe ya sea directamente con un faro o a través de un microscopio operativo (Figura 22)
• Las biopsias se pueden tomar transoralmente o transnasalmente bajo visión

Figura 22: Vista transoral de nasofaringe con espejo de laringoscopia

• Alternativamente, se puede desplazar el paladar blando anteriormente con un espéculo postnasal Yankauer (Figura 23) y tomar la biopsia a través del espéculo bajo visión directa

Errores de la biopsia nasofaríngea

• Evitar la biopsia transnasal sin visualización endoscópica directa de la masa
• Diatesis sangrante
• Masas vasculares
• Lesiones cerca de la arteria carótida, es decir, de la pared lateral detrás de la fosa de Rosenmuller (Figuras 21, 22)
• Arteria carotídea interna ectáticaAnestesia local inadecuada
• Lesión quística que causa fuga de CSF

Figura 23: Espéculo postnasal Yankauer

Referencias

1. Babshet M et al. Eficacia de la citología con cepillo oral en la evaluación de las lesiones orales premalignas y malignas. J Cytol 2011; 28 (4) :165-72

Autores

Kathy Taylor MBChb, DCH (SA), MMed
(Anat Path) Patólogo
anatómico
Pathcare
Ciudad del Cabo, Sudáfrica
[e-mail]

Ellen Bolding MBChb, DCH (SA), MMed
(Anat Path) Patólogo
anatómico
Pathcare
Ciudad del Cabo, Sudáfrica
[e-mail]

Autor y Editor

Johan Fagan MBChB, FCS (ORL), MMed
Profesor y Presidente
División de Otorrinolaringología
Universidad de Ciudad del
Cabo Town, Sudáfrica
[e-mail]

El Atlas de Acceso Abierto de Otorrinolaringología, Cirugía Operativa de Cabeza y Cuello por Johan Fagan (Editor) [e-mail] está bajo una Licencia Creative Commons Atribución - No Comercial 3.0 Unported